结果
1、全基因组关联分析(GWAS)鉴定一个SnTox5候选基因
Fig.1SnTox5全基因组关联定位(GWAS)分析
Fig.2SnTox5和SnTox3之间的结构同源性
2、在Snn5存在的情况下，插入SnTox5将无*性转化为*性
Fig.3SnTox5的表型和QTL分析验证
Table1.相关QTL的复合区间作图(CIM)分析
3、SnTox5的核苷酸多样性因地理区域而异
Table2.在LP29上产生SnTox5不同亚型的分离株与美国小麦颖枯菌种群的平均病害反应类型
Table3.计算整个SnTox5基因的pN/pS比值，以及编码小麦颖枯菌UpperMidwestandSouth/East群体成熟蛋白的基因区域
4、SnTox5亚型变异有助于致病力的定量水平
Fig.4SnTox5亚型在UpperMidwest、South/East、OregonandOklahoma的小麦颖枯菌种群中的流行情况
Fig.5SnTox5活性亚型的一部分 酸序列，代表导致疾病变异的关键替代物，以亚型1为参照
Table4.在含有SnTox5活性亚型的颖枯菌分离株对LP29的平均病害反应中，第位和第位的 酸替换贡献了个
5、SnTox5表达在穿透后但在可见病变之前达到高峰
Fig.6SnTox5在接种Sn的Lebsock中的植物体内的时间表达谱
6、激光共聚焦显微镜显示SnTox5促进LP29的完全定植
Fig.7激光共聚焦显微镜观察了红荧光蛋白(RFP)标记的颖枯菌Sn和Sn2kΔTox5-15在小麦差异系LP29(Snn5)上的侵染过程
Fig.8激光共聚焦显微镜观察了红色荧光蛋白(RFP)标记的颖枯菌Sn79-(无*)和Sn79+Tox5-3对小麦差异品系LP29(Snn5)的感染过程
Fig.9激光共聚焦显微镜观察的(a).LP29(Snn5)和(b).Lebsock(Snn5和Tsn1)菌株Sn(+SnTox5，+SnToxA)和Sn2kΔTox5(-SnTox5，+SnToxA)接种后不同时间点的菌体体积
7、SnTox5即使在没有Snn5的情况下也有利于LP29叶肉层的定植
Fig.10激光共聚焦显微镜观察标记在LP29和LP29Δsnn5上接种小时后(hpi)的Sn和Sn2kΔTox5-15
8、Sn和Sn2kΔTox5-15在Lebsock上的激光共聚焦分析
Fig.11激光共聚焦显微镜观察红色荧光蛋白(RFP)标记颖枯菌菌株Sn和Sn2kΔTox5-15对小麦品种Lebsock(Snn5和Tsn1)的侵染过程
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